Acquis d'apprentissage

Au terme des activités d’enseignement théorique et pratique, l’étudiant sera capable de :


1. Génomique : architecture du génome

  • Décrire avec précision la structure moléculaire de l’ADN (composition chimique des nucléotides, types de liaisons, structure en double hélice, complémentarité des bases, rôle dans la stabilité et la transmission de l’information génétique).
  • Décrire la structure moléculaire de l’ARN, ses caractéristiques chimiques, ses différentes structures (primaire, secondaire, tertiaire), ainsi que les modifications post-transcriptionnelles et leurs implications fonctionnelles.
  • Expliquer le processus de réplication de l’ADN, incluant les étapes, les enzymes, et la spécificité du proofreading.
  • Expliquer les principaux systèmes de réparation post-réplicative de l’ADN (MMR, BER, NER, HR, NHEJ) et leur rôle dans la stabilité génétique.
  • Décrire la structure des chromosomes humains (centromère, bras, télomères, chromosomes acrocentriques), expliquer les particularités des chromosomes sexuels et l’inactivation du chromosome X.
  • Décrire l’organisation de la chromatine : histones, nucléosomes, euchromatine/hétérochromatine, niveaux de compaction, territoires chromosomiques, compartiments A/B, TADs, boucles enhancer-promoter.
  • Décrire les principales caractéristiques de l’ADN mitochondrial (structure, origine, spécificités par rapport à l’ADN nucléaire).
  • Expliquer la répartition quantitative et qualitative du génome humain (séquences répétées, gènes codants, gènes non codants) et leur rôle fonctionnel.
  • Classifier et décrire les séquences répétées du génome (répétitions en tandem, éléments transposables, duplications segmentaires, pseudogènes, rétro-pseudogènes).


2. Expression et régulation génique

  • Décrire la structure des gènes codants (exons, introns, promoteurs, régions régulatrices).
  • Décrire et expliquer le processus de transcription : formation de l’ARN pré-messager, épissage, coiffe, polyadénylation, édition de l’ARN.
  • Décrire et expliquer la traduction : rôle des ribosomes, ARNt, surveillance de qualité (NMD), modifications post-traductionnelles et repliement des protéines.
  • Classifier les petits ARN non codants (ARNt, ARNr, snARN, snoARN, piARN, miARN, siARN) et les longs ARN non codants (ARN antisens, autres lncARN), expliquer leur fonction dans la régulation de l’expression génique.


3. Variabilité génomique

  • Distinguer les différents types de variations génomiques : SNVs, CNVs, comprendre leurs différences, implications génétiques et physiopathologiques.


4. Génétique formelle

  • Définir les concepts de génotype, phénotype, allèle, homozygotie/hétérozygotie, dominance/récessivité.
  • Maîtriser les symboles standards des arbres généalogiques ; construire ou interpréter des arbres simples, identifier porteurs/affectés/mariages consanguins.
  • Analyser un arbre généalogique pour déterminer le mode d’hérédité (autosomique dominant/récessif, X, mitochondrial).
  • Expliquer les concepts clés des modes d’hérédité sur base d’illustrations cliniques et d’arbres généalogiques : en particulier, pénétrance incomplète, expressivité variable, mutations de novo, mosaïcisme germinal/somatique, empreinte génomique pour l’autosomique dominant ; consanguinité, hétérogénéité allélique, pseudo-dominance pour l’autosomique récessif ; homoplasmie/hétéroplasmie pour l’hérédité mitochondriale.
  • Relier les mécanismes des variants pathogènes à leurs conséquences moléculaires (gain de fonction, effet dominant négatif, perte de fonction/haploinsuffisance, variants hypomorphes).
  • Évaluer le risque génétique statistique dans un arbre généalogique, appliquer les lois de Mendel et calculer un coefficient de consanguinité ; interpréter en termes de risque d’homozygotie pour des allèles récessifs.


5. Pathologies génétiques constitutionnelles

  • Connaitre la définition d’une maladie rare.
  • Distinguer anomalies chromosomiques équilibrées/déséquilibrées, relier remaniements structurels (translocations, inversions) au risque gamétique.
  • Décrire les anomalies fréquentes des chromosomes sexuels (45,X, 47,XXY, autres), expliquer leurs origines et leur impact sur l’expression génique.
  • Décrire les trisomies constitutionnelles viables (21, 18, 13), expliquer la non-disjonction, ses conséquences (aneuploïdie, mosaïcisme).
  • Différencier la triploïdie des trisomies et connaitre ses mécanismes (digynie/dispermie).
  • Reconnaitre les anomalies structurelles déséquilibrées (isochromosomes, anneaux, délétions/duplications), relier aux mécanismes de cassure-réparation de l’ADN et comprendre leur impact clinique.
  • Expliquer la pénétrance incomplète et l’expressivité variable de certains CNVs.
  • Comprendre la classification des maladies monogéniques par voies moléculaires (ex. : RASopathies) et leurs implications thérapeutiques.
  • Décrire les mécanismes d’empreinte génomique parentale (méthylation, modifications d’histones) et leurs conséquences sur l’expression allélique.
  • Pour la région 15q11-13, décrire les mécanismes à l’origine des syndromes de Prader-Willi et d’Angelman, conséquences pour le conseil génétique.
  • Expliquer le mécanisme d’instabilité des répétitions et ses conséquences physiopathologiques (maladies à expansion de triplets).
  • Différencier prémutation/mutation complète pour le locus FMR1 et syndrome X Fragile, implications cliniques et génétiques.
  • Décrire le phénomène d’anticipation pour le locus DMPK/dystrophie myotonique de Steinert.
  • Comprendre le principe des études GWAS et l’identification de loci de susceptibilité.
  • Comprendre les applications de la médecine personnalisée (polygenic risk scores).


6. Oncogénétique

  • Comprendre les mécanismes de cancérogenèse (lésions endogènes/exogènes), le rôle des gènes suppresseurs, des gènes de réparation de l’ADN et des (proto)oncogènes.
  • Différencier cancers sporadiques / prédispositions héréditaires, comprendre les mécanismes génétiques.
  • Expliquer la théorie de Knudson (“two-hit hypothesis”) et la perte d’hétérozygotie.
  • Décrire les mécanismes moléculaires des prédispositions héréditaires aux cancers du sein/ovaire (BRCA1/BRCA2), leurs conséquences et les stratégies de suivi (surveillance, inhibiteurs de PARP).
  • Décrire les mécanismes des prédispositions au cancer colorectal (syndrome de Lynch, polypose adénomateuse familiale), conséquences en termes de surveillance et prévention.


7. Techniques d’analyse génétique

  • Connaitre les principes, indications, avantages et limites des techniques d’analyse chromosomique (caryotype, FISH, CGH-arrays, SWGS, cartographie optique du génome) et des techniques géniques (PCR, Sanger, Southern blotting, NGS short/long reads).
  • Comprendre l’apport de l’analyse de l’ARN (cDNA, RNA-Seq) et des protéines (western blot, protéome).
  • Comprendre l’apport des modèles cellulaires in vitro (cultures, souches, organoïdes, transfection/transduction, CRISPR-Cas9).
  • Comprendre l’apport des modèles animaux in vivo (murins, zebrafish).
  • Connaitre la classification des cellules souches en fonction du potentiel de différenciation, illustrer chaque catégorie, différencier cellules pluripotentes embryonnaires et iPSC.
  • Décrire la méthode d’édition génomique (CRISPR-Cas9) et ses applications.


8. Génétique clinique

  • Comprendre les contextes de conseil génétique (postnatal, prénatal, préconceptionnel, prédictif).
  • Comparer les techniques de diagnostic prénatal (amniocentèse, ponction de villosités choriales).
  • Comprendre le principe du diagnostic préimplantatoire.
  • Comprendre les principes, défis et enjeux éthiques des stratégies de screening préventif (préconceptionnel, prénatal, neonatal).
  • Comprendre le principe, avantages et limites du NIPT (non invasive prenatal testing).


9. Stratégies thérapeutiques

  • Comprendre, distinguer et comparer les stratégies thérapeutiques (cellulaire, protéomique, transcriptomique, génomique).
  • Comparer les enjeux immunitaires et technologiques entre greffe de cellules de donneur et greffe de cellules souches (clonage thérapeutique, iPSC).
  • Décrire les différentes approches de thérapie transcriptomique (siRNA, ASO, read-through).
  • Décrire les principes de la thérapie génique.
  • Illustrer ces stratégies dans la dystrophie musculaire de Duchenne et l’amyotrophie spinale.


Objectifs

L’unité d’enseignement de Génétique Moléculaire Humaine a pour objectif d’introduire les principes fondamentaux de la génomique, de la génétique formelle et clinique, ainsi que les principales techniques d’analyse génétique, afin de permettre à l’étudiant de comprendre les bases moléculaires des maladies génétiques constitutionnelles et leur implication dans la pratique pharmaceutique. Le cours vise à fournir les concepts nécessaires à l’analyse critique et à l’interprétation des avancées de la médecine personnalisée, en intégrant les dimensions éthiques, technologiques et cliniques de la génétique humaine.


Les objectifs généraux de ce cours sont les suivants :

  • Acquérir une vision intégrée de l’architecture et du fonctionnement du génome humain.
  • Comprendre l’impact des variants génétiques sur la santé humaine et le développement de pathologies.
  • Appréhender le raisonnement génétique en lien avec les principaux modes d’hérédité et l’interprétation des arbres généalogiques.
  • Se familiariser avec les stratégies de conseil génétique et de diagnostic en génétique humaine.
  • Identifier l’apport et les limites des différentes techniques d’analyse génétique dans le contexte pharmaceutique et biomédical.
  • Comprendre et analyser les approches thérapeutiques innovantes issues des avancées en génétique moléculaire.


Le cours met l'accent sur la compréhension des mécanismes et le raisonnement.

 

Contenu

Le cours débute par une exploration approfondie de la génomique humaine, en détaillant la structure moléculaire de l’ADN et de l’ARN, les mécanismes de réplication et de réparation, ainsi que l’organisation des gènes et des chromosomes. L’accent est mis sur la diversité du génome : séquences répétées, gènes codants et non codants, et mécanismes de variabilité génétique (SNVs, CNVs).

La partie sur la génétique formelle introduit les principes fondamentaux du génotype et du phénotype, la transmission des traits héréditaires, et la lecture des arbres généalogiques. Elle détaille les différents modes d’hérédité : autosomique dominant, autosomique récessif, lié au chromosome X et mitochondrial, avec des exemples cliniques illustrant chaque mécanisme.

L’étude des pathologies génétiques constitutionnelles s’articule autour des anomalies chromosomiques (nombre et structure), des maladies monogéniques (comme les RASopathies, chromatinopathies, ciliopathies), des maladies liées à l’empreinte génomique, des pathologies à expansion de triplets et des maladies polygéniques ou multifactorielle (analysées notamment par GWAS).

La section sur l’oncogénétique examine les mécanismes de la cancérogenèse, la réparation de l’ADN, et les principales prédispositions héréditaires aux cancers (sein/ovaire, colon), en intégrant la théorie de Knudson et la notion de perte d’hétérozygotie.

Le cours présente ensuite les techniques de détection et d’analyse des maladies génétiques, de l’étude des chromosomes (caryotype, FISH, CGH-array, SWGS, cartographie du génome) à l’analyse des gènes (PCR, Southern blotting, NGS) et aux études fonctionnelles (analyse de l’ARN, des protéines, modèles cellulaires et animaux).

Enfin, les aspects de génétique clinique sont abordés : contexte de consultation et de conseil génétique, diagnostics (prénatal, postnatal, préimplantatoire, prédictif) et stratégies de screening. Le cours se conclut par un panorama des stratégies thérapeutiques innovantes : thérapies cellulaires, protéomiques, transcriptomiques et géniques.

Table des matières

Contenu du cours – Table des matières




1.Génomique : l’architecture du génome

1.1. La double hélice d’ADN, les gènes, les chromosomes

1.1.1. Définition du génome

1.1.2. Structures moléculaires de l’ADN et de l’ARN

1.1.2.1. Structure moléculaire de l’ADN

– Composition chimique des nucléotides

– Liaisons entre les nucléotides

– Structure en double hélice

1.1.2.2. Structure moléculaire de l’ARN

– Composition chimique

– Structure primaire, secondaire, tertiaire

– Modifications post-transcriptionnelles

– Rôles fonctionnels liés à la structure

1.1.3. Réplication de l’ADN et les mécanismes de réparation post-réplicatives

1.1.3.1. Processus de réplication de l’ADN

1.1.3.2. Mécanismes de fidélité

– Complémentarité des bases

– Activité de relecture (proofreading) de l'ADN polymérase

– Systèmes de réparation post-réplicative (MMR, BER, NER, HR, NHEJ)

1.1.3.3. Importance de la stabilité génétique

1.1.4. Structure des gènes

1.1.5. Organisation de l’ADN nucléaire

1.1.5.1. Les chromosomes chez l’être humain

– Structure des chromosomes

– Particularités des chromosomes sexuels et inactivation du chromosome X

1.1.5.2. La structure de la chromatine

1.1.5.3. La conformation de la chromatine

– Territoires chromosomiques

– Compartiments A et B

– Domaines topologiquement associés (TADs)

– Boucles enhancer-promoter

1.1.6. Organisation de l’ADN mitochondrial

1.2. La complexité de la composition du génome humain

1.2.1. Les séquences répétées

1.2.1.1. ADN répété en tandem

– Satellites

– Minisatellites et répétitions télomériques

– Microsatellites

1.2.1.2. ADN répétitif dispersé : éléments génétiques mobiles

– Transposons ADN

– Rétrotransposons LINEs

– Rétrotransposons SINEs

– Rétrotransposons HERV – LTR

1.2.1.3. Duplications segmentaires, pseudogènes et rétro-pseudogènes

1.2.2. Les gènes codants

1.2.2.1. Structure des gènes codants

1.2.2.2. La transcription

– Le promoteur et les ARN polymérases

– L’ARN pré-messager

– Modifications post-transcriptionnelles et formation de l’ARN messager (épissage, coiffe, polyadénylation, édition de l’ARN)

1.2.2.3. La traduction

– Rôle des ribosomes et des ARNt

– Contrôle de la qualité des ARNm par NMD

– Modifications post-traductionnelles (clivage, modifications chimiques)

– Repliement des protéines

1.2.3. Les gènes non-codants

1.2.3.1. Les petits ARN non codants (<200 nucléotides)

– ARNt

– ARNr

– snARN

– snoARN

– piARN

– miARN

– siRNA

1.2.3.2. Les longs ARN non codants (>200 nucléotides)

– ARN antisens

– Autres lncARN

1.3. La variabilité du génome humain

1.3.1. Les SNVs (Single Nucléotide Variants)

1.3.2. Les CNVs (Copy Number Variations)

1.4. La science Evo-Devo




2.La génétique formelle

2.1. Concepts fondamentaux de la génétique formelle

– Génotype et phénotype

– Allèles d’un gène

– Homozygotie et hétérozygotie

– Dominance et récessivité des allèles

– Arbre généalogique : un outil essentiel

2.2. Les modes d’hérédité des caractères et maladies génétiques

2.2.1. Hérédité autosomique dominante

2.2.1.1. Principes

2.2.1.2. Particularités

– Pénétrance incomplète

– Expressivité variable

– Hétérogénéité génétique, phénocopie, pléiotropie

– Mutation de novo

– Mosaïcisme germinal parental

– Mosaicisme somatique

– Empreinte génomique parentale (maternelle ou paternelle)

– Homozygotie dominante

Vignettes cliniques : maladie de Marfan, neurofibromatose de type 1, hypercholestérolémie familiale, achondroplasie, ostéogenèse imparfaite

2.2.1.3. Mécanismes moléculaires de la dominance

– Mutations avec gain de fonction

– Mutations à effet dominant négatif

– Mutations avec perte de fonction et haploinsuffisance

2.2.2. Hérédité autosomique récessive

2.2.2.1. Principes

Vignette clinique : mucoviscidose

2.2.2.2. Particularités

– Consanguinité

– Hétérogénéité allélique

– Pénétrance incomplète

– Pseudo-dominance

2.2.2.3. Mécanismes moléculaires de la récessivité

– Mutations avec perte de fonction

– Mutations hypomorphes

2.2.3. Hérédité liée au chromosome X

2.2.3.1. Principes (récessif/dominant)

Vignette clinique : hémophilie A et B, dystrophie musculaire de Duchenne, syndrome de Rett

2.2.3.2. Particularités

– Mosaïcisme chez les femmes

– Pénétrance incomplète et expressivité variable

– Mutations de novo

– Létalité chez les sujets masculins

– Expression similaire dans les 2 sexes

– Atteinte préférentielle des femmes par mosaïcisme cellulaire fonctionnel

2.2.4. Hérédité liée à l’ADN mitochondrial

2.2.4.1. Principes

2.2.4.2. Particularités

– Homoplasmie et hétéroplasmie

– Pénétrance incomplète et expressivité variable

Vignette clinique : neuropathie optique héréditaire de Leber




3.Les pathologies génétiques constitutionnelles

3.1. Les pathologies chromosomiques

3.1.1. Anomalies de nombre des chromosomes sexuels

3.1.1.1. Constitution 45,X et ses variantes

Vignette clinique : syndrome de Turner

3.1.1.2. Constitution 47,XXY et ses variantes

Vignette clinique : syndrome de Klinefelter

3.1.1.3. Autres variations de nombre des chromosomes sexuels

– 47,XXX et 47,XYY

– 48,XXXX ; 48,XXXY ; 48,XXYY et 49,XXXXY

3.1.2. Anomalies de nombre et de structure des autosomes

3.1.2.1. Anomalies de nombre des autosomes

– Trisomies (21, 18, 13)

Vignette clinique : trisomies 21, 18, 13

– Triploïdie

Vignette clinique : triploïdie

3.1.2.2. Anomalies de structure équilibrées des autosomes

– Translocations réciproques

– Translocations robertsoniennes

– Insertions équilibrées

– Inversions équilibrées

Vignette clinique : syndrome F

3.1.2.3. Anomalies de structure déséquilibrées des autosomes

– Isochromosomes

Vignette clinique : syndrome de Pallister-Killian

– Chromosomes en anneau

– Délétions et duplications

Vignettes cliniques : syndrome du cri-du-chat;: microdélétion 22q11; syndrome de Williams Beuren; syndrome de Smith-Magenis

– CNVs à pénétrance incomplète et expressivité variable

3.2. Les pathologies monogéniques

3.2.1. Les RASopathies

Vignette clinique : syndrome de Noonan

3.2.2. Chromatinopathies et cohésinopathies

Vignette clinique : syndrome de Kabuki, Cornelia de Lange

3.2.3. Ciliopathies

Vignette clinique : syndrome de Joubert

3.2.4. Pathologies de la voie de signalisation TGF-β

Vignette clinique : syndrome de Loeys-Dietz

3.3. Maladies liées à des anomalies de l’empreinte parentale

3.3.1. Définitions

3.3.2. Région 15q11q13

Vignette clinique : syndrome de Prader-Willi, Angelman

3.3.3. Région 11p15

Vignette clinique : syndrome de Beckwith-Wiedemann, Silver-Russel

3.4. Maladies à expansion de triplets

3.4.1. Définitions

3.4.2. Mécanismes physiopathologiques

3.4.3. Maladies à expansion de triplets

Vignette clinique : syndrome X Fragile, dystrophie myotonique de Steinert, chorée de Huntington

3.5. Maladies polygéniques et multifactorielles

3.5.1. Études GWAS

3.5.2. Médecine personnalisée




4.L’oncogénétique

4.1. Mécanismes de la cancérogenèse

4.1.1. Lésions d’origine endogène

4.1.2. Lésions d’origine exogène

4.1.3. Mécanismes de réparation de l’ADN

4.1.3.1. Réparation directe de la lésion

– Photolyase pour les dimères de thymine

– Méthyltransférases pour m6G, m1A, m3C

4.1.3.2. Systèmes de réparation post-réplicative (MMR, BER, NER, HR, NHEJ)

(cf. 1.1.3.2)

4.2. Prédispositions héréditaires aux cancers

4.2.1. Cancers sporadiques et avec prédisposition héréditaire

4.2.2. Théorie de Knudson

4.2.3. Perte d’hétérozygotie

4.2.4. Prédispositions héréditaires aux cancers

4.2.4.1. Cancers du sein et de l’ovaire (gènes BRCA1 et BRCA2)

4.2.4.2. Cancers du colon (syndrome de Lynch, polypose adénomateuse familiale)




5.Techniques de détection des maladies génétiques constitutionnelles

5.1. Techniques d’analyses des anomalies génétiques à l’échelle chromosomique

5.1.1. Caryotype standard

5.1.2. Technique FISH

5.1.3. Caryotype moléculaire

5.1.3.1. CGH-arrays (comparative genomic hybridization)

5.1.3.2. SWGS (shallow whole genome sequencing)

5.1.3.3. Cartographie optique du génome

Tableau récapitulatif

5.2. Techniques d’analyse des anomalies génétiques à l’échelle du gène

5.2.1. PCR et séquençage de Sanger

5.2.2. Southern Blotting

5.2.3. PCR méthylation spécifique (MS-PCR)

5.2.4. Séquençage haut débit (NGS, Next Generation Sequencing)

5.2.4.1. NGS short reads (whole exome sequencing, whole genome sequencing)

5.2.4.2. NGS long reads (Nanopore, PacBio)

Tableau récapitulatif

5.3. Études fonctionnelles

5.3.1. Analyse de l’ARN

5.3.1.1. Analyse ciblée du cDNA (role de la Reverse Transcriptase)

5.3.1.2. Transcriptome (RNA-Seq)

5.3.2. Analyse des protéines

5.3.2.1. Western Blotting

5.3.2.2. Protéome

5.3.3. Modèles cellulaires (analyses in vitro)

5.3.3.1. Cultures cellulaires, cellules souches et organoïdes

5.3.3.2. Transfection et transduction cellulaires

5.3.3.3. Méthodes de mutagenèse : édition génomique (CRISPR-Cas9)

5.3.4. Modèles animaux (analyses in vivo)

5.3.4.1. Modèles zebrafish

5.3.4.2. Modèles murins



6.La génétique clinique

6.1. Consultation et conseil génétique clinique

6.2. Contextes de conseil génétique

6.2.1. Diagnostic postnatal

6.2.2. Diagnostic prénatal

6.2.2.1. Amniocentèse

6.2.2.2. Ponction de villosités choriales/trophoblaste (CVS)

6.2.3. Diagnostic préimplantatoire

6.2.4. Diagnostic prédictif

6.3. Stratégies de screening préventif

6.3.1. Screening préconceptionnel (carrier screening)

6.3.2. Screening prénatal (test NIPT)

6.3.3. Screening néonatal (Guthrie, testing génétique néonatal)




7.Stratégies thérapeutiques

7.1. Thérapie cellulaire

7.1.1. Greffe d’organe

7.1.2. Greffe de cellules souches

7.1.2.1. Cellules souches de donneur

7.1.2.2. Cellules souches obtenues par clonage thérapeutique ou iPSC, avec édition génomique

7.2. Thérapie protéomique

7.3. Thérapie transcriptomique

7.3.1. Les petits ARN interférants (siRNA)

7.3.2. Oligonucléotides antisens (ASO)

7.4. Thérapie génomique

7.4.1. Stimulation du promoteur d’un gène partiellement fonctionnel ou d’un gène compensatoire

7.4.2. Thérapie génique (« gène médicament »)

Méthodes d'enseignement

enseignement magistral, schémas construits au tableau, illustrations cliniques par diapositives Power Point

Méthode d'évaluation

Mode d'examen identique en première et en seconde session. Examen écrit, sous forme de Questions à Choix Multiples (QCM).


Les modalités exactes de l’évaluation sont susceptibles d’être modifiées lors de l’établissement du calendrier des examens, en fonction des contraintes pratiques auxquelles l’administration facultaire pourrait être confrontée, ou en cas de maladie, de force majeure, d’urgence liée à un stage, empêchant l’étudiant de présenter l’examen à la date initialement prévue.



Sources, références et supports éventuels

Webcampus (syllabus et fichiers powerpoint)

Langue d'enseignement

Français
Formation Programme d’études Bloc Crédits Obligatoire
Bachelier en sciences pharmaceutiques Standard 0 3
Bachelier en sciences pharmaceutiques Standard 2 3